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Smad4 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-421527 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
Smad4 HDR 质粒 (m) | sc-421527-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Smad4 编码小鼠细胞中经典 TGF-β 和 BMP 信号通路的核心介导因子,可与受体调控型 SMAD(SMAD2/3 或 SMAD1/5/8)形成转录复合体,从而调控依赖细胞情境的基因表达。通过这些复合体,SMAD4 协调细胞命运决定、增殖抑制、上皮–间质转化以及细胞外基质重塑等程序。SMAD4 的活性还与 MAPK、Wnt/β-连环蛋白和 PI3K/AKT 等通路整合,共同塑造转录输出与细胞可塑性。在体内与细胞体系中,破坏 Smad4 依赖的信号传导常被用于建立与肿瘤抑制、纤维化生物学、免疫调控及发育表型相关机制的模型。
Smad4 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Smad4基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Smad4基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,Smad4 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Smad4靶位点的同源臂包围。
与 Smad4 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Smad4 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。