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Flk-1/KDR/VEGFR2CRISPR激活质粒(h) | sc-400118-ACT | 20 µg | CNY2986.00 |
KDR 编码受体酪氨酸激酶 VEGFR2(Flk-1/KDR),是 VEGF 驱动的血管内皮反应中的关键(主要)信号节点。配体结合并触发受体自磷酸化后,VEGFR2 会激活 PI3K–AKT、PLCγ–PKC–MAPK/ERK、Src/FAK 以及与 eNOS 相连的级联通路,从而协同调控内皮细胞的增殖、迁移、生存与通透性。该通路是血管生成与淋巴管生成程序的核心,常用于研究肿瘤新生血管形成、缺血相关的重塑,以及炎症性血管功能障碍等情境。KDR 信号失调与微血管完整性改变及异常的内皮细胞–周细胞相互作用相关,这些变化与心血管及眼科疾病的生物学机制密切相关。
Flk-1/KDR/VEGFR2 CRISPR激活质粒(h)提供了一种靶向、非破坏性的方法,可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性KDR的表达。
Flk-1/KDR/VEGFR2 CRISPR激活质粒(h)是一个由三条质粒组成的协同激活介导(SAM)系统,旨在对人类细胞系中的KDR基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变(D10A 和 N863A)的无催化活性的 Cas9(dCas9)为核心,这些突变消除了核酸酶活性,同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合,并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用,并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA,其与两个MS2 RNA适配体融合,这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点,并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送,以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后,SAM复合物结合于KDR转录起始位点上游约200 bp处,VP64、p65和HSF1在此协同作用,招募转录 machinery并驱动内源性Flk-1/KDR/VEGFR2表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同, dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列,从而保留了原生的KDR位点,并能够研究内源性位点上依赖于Flk-1/KDR/VEGFR2的转录反应,使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在KDR表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟Flk-1/KDR/VEGFR2通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。