非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
因子 VII 抗体 (RFF-VII/2): sc-59507. 人血浆中因子 VII 表达的 Western 印迹分析.
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
Factor VII双切口酶质粒(h): sc-402582-NIC
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- Factor VII 双切口酶质粒（h）含有一对质粒，分别编码D10A突变的Cas9核酸酶，和目标特异的 20 nt 向导RNA （gRNA），与其相应的/%base_sku_name%/ CRISPR/Cas9敲除质粒相比，它在基因敲除方面具有更好的特异性
- 成对的向导RNA序列与目标基因中约20个碱基对互补，从而使Cas9可以模仿DNA双链断裂（DSB），介导特异的基因组DNA双切割
- 质粒对中的一个包含供筛选使用的嘌呤霉素抗性基因；另一个包含供观察转染使用的绿色荧光蛋白标记
- Factor VII双切酶质粒（h）和Factor VII双切酶质粒（h2）编码针对F7的不同配对gRNA设计。其中一种或两种设计可能均有提供
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：Factor VII: sc-101369，通过WB, IF或者IHC分析
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
Factor VII双切口酶质粒(h) | sc-402582-NIC | 20 µg | CNY3084.00 | |||
Factor VII双切口酶质粒(h2) | sc-402582-NIC-2 | 20 µg | CNY3084.00 |
人类 F7 基因编码凝血因子 VII，这是一种维生素 K 依赖性的丝氨酸蛋白酶酶原，主要由肝细胞产生并分泌入血浆。在血管受损时，凝血因子 VII 与组织因子（F3）结合并被转化为活化的凝血因子 VIIa，形成外源性凝血酶原激酶复合体（extrinsic tenase），通过激活凝血因子 X 和凝血因子 IX 启动凝血级联反应，继而产生凝血酶并形成纤维蛋白。组织因子–因子 VIIa 这一轴还可通过蛋白酶激活受体（PARs）与细胞信号传导发生交叉，将止血相关的蛋白水解过程与炎症及血管生物学通路连接起来。F7 的表达或活性异常与出血倾向相关，同时也常在血栓风险以及凝血–炎症串扰的研究背景下被关注。
Factor VII 双切酶质粒（h）由一对匹配的质粒组成，专为在 human 细胞系中对 F7 位点进行高特异性编辑而设计。每个质粒分别表达Cas9 D10A切口酶和针对F7内不同DNA链的独特sgRNA。当这两种切口酶被引导至相邻但位于DNA链相反侧的位点时，会产生错位的单链切口，从而共同形成错位双链断裂，这需要两个引导RNA在靶位点上协同发挥作用。由此产生的DNA断裂通过内源性细胞修复途径（最常见的是非同源末端连接（NHEJ））得到修复，从而导致插入或缺失，进而破坏F7的功能。通过要求双sgRNA在靶位点结合，双切口方法提高了编辑特异性，并为需要对靶向精度进行额外控制的应用提供了互补的CRISPR策略。
为高效识别编辑后的细胞，其中一个质粒编码GFP以实现转染细胞群的荧光可视化，而配套质粒则携带嘌呤霉素抗性基因用于抗生素筛选。这些特性共同支持共转染细胞群的高效富集，并简化了F7基因失活克隆的验证流程。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。