非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m): sc-419607
- 针对种属：mouse
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 基因敲除（KO）质粒（m） 是一组质粒混合物，每种质粒均编码 Cas9 核酸酶及针对特定靶点的 20 核苷酸引导 RNA（gRNA），其设计基于 GeCKO v2 文库中的序列，旨在实现最高的基因敲除效率
- gRNA序列引导Cas9在Waf1/Cip1/CDKN1A p21基因组位点诱导位点特异性双链断裂（DSBs），从而通过非同源末端连接（NHEJ）实现基因敲除
- 建议将 Waf1/Cip1/CDKN1A p21 HDR 质粒 (m) (sc-419607-HDR) 与 Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 KO 质粒 (m) 共同转染，通过 HDR 介导的嘌呤霉素抗性 cassete 和 RFP 报告基因整合，实现对成功编辑细胞的筛选
- Waf1/Cip1/CDKN1A p21 HDR质粒（m）是一组质粒混合物，其中每条质粒均含有一个同源导向修复（HDR）模板，对应于Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 KO质粒（m）中的gRNA靶位点
- 每个HDR质粒包含两个约800 bp的同源臂，分别位于嘌呤霉素抗性基因和RFP基因片段的两侧，其设计目的是结合Cas9诱导的双链断裂位点周围的基因组DNA序列，从而促进精确的HDR介导整合
- 嘌呤霉素抗性基因和 RFP 基因两侧有 LoxP 位点，因此在建立稳定的基因敲除细胞系后，可以通过 Cre 重组酶（Cre 向量：sc-418923）去除选择标记。
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：Waf1/Cip1/CDKN1A p21: sc-6246，通过WB, IF或者IHC分析
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-419607 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 HDR 质粒 (m) | sc-419607-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
概述
Cdkn1a 编码细胞周期依赖性激酶抑制因子 p21（Waf1/Cip1），它是 p53 应激反应网络的核心效应因子，可抑制 CDK2/CDK1 活性，并强化 G1/S 与 G2/M 细胞周期检查点。p21 整合来自 DNA 损伤、氧化应激和致癌基因激活的信号，从而调控细胞周期停滞、细胞衰老以及情境依赖性的细胞凋亡，同时也影响 DNA 复制动力学与修复通路的选择。通过与 PCNA 及 cyclin–CDK 复合物相互作用，p21 调节 DNA 合成与基因组稳定性，将检查点控制与复制应激反应联系起来。Cdkn1a 活性失调与肿瘤发生、与衰老相关的组织功能障碍以及炎症状态有关；在这些情况下，衰老与损伤应答的改变会促成与疾病相关的表型。
Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 敲除质粒（m）是一组质粒池，旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Cdkn1a基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA，针对Cdkn1a基因座内的不同位点，同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶，并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率，为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂（DSBs）可通过非同源末端连接（NHEJ）修复，或者当与随附的HDR供体模板配合使用时，可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复（HDR）进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用，可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群，从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
同源导向修复 (HDR) 供体 — 含 RFP 报告基因的嘌呤霉素抗性 cassete
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用，Waf1/Cip1/CDKN1A p21 HDR质粒（m）包含一个HDR供体构建体，其中含有嘧啶霉素抗性盒（PuroR）和红色荧光蛋白（RFP）报告基因，两侧由针对特定Cdkn1a靶位点的同源臂包围。
与 Waf1/Cip1/CDKN1A p21 CRISPR/Cas9 敲除质粒（m）共转染时：
- PuroR-RFP 片段通过同源重组（HDR）整合到 Cas9 切割位点，从而破坏 Cdkn1a 的开放阅读框。
RFP 荧光可作为整合成功的即时视觉指示，支持在嘌呤霉素筛选之前或同时，基于荧光对编辑后的细胞进行鉴定或分选。
通过嘌呤霉素抗性可确认编辑成功的细胞，从而大幅减轻克隆筛选的工作量。
该筛选策略非常适合构建稳定的克隆性敲除细胞系，用于下游的功能研究、药物筛选或模型开发。
Cre-lox 盒去除系统
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼，可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体：sc-418923，瞬时表达 Cre 重组酶，切除基因盒，在Cdkn1a 基因座内留下最小的残留 loxP 位点，消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
- 最大限度减少对局部染色质结构及邻近调控元件的干扰
在编辑位点恢复近乎天然的基因组环境
支持在同一细胞系中重复使用嘌呤霉素筛选策略进行后续编辑
主要特点
- gRNA靶向对Waf1/Cip1/CDKN1A p21功能至关重要的Cdkn1a外显子
SpCas9与sgRNA由单一质粒共表达，简化递送流程
含嘌呤霉素抗性的HDR供体，便于阳性克隆筛选
由Cre重组酶载体携带的loxP夹杂PuroR盒，实现无缝标记去除
提供转染即用型
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。