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TRIM8 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-429995 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
TRIM8 HDR 质粒 (m) | sc-429995-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Trim8 编码 TRIM 家族中的 RING 型 E3 泛素连接酶 TRIM8,该蛋白通过依赖泛素的通路调控蛋白稳定性与信号传导。研究表明,TRIM8 参与先天免疫与炎症信号的调节,包括 NF-κB 以及与干扰素相关的转录程序;同时,它还可通过与 p53 等肿瘤抑制因子相关网络的相互作用,影响细胞周期控制与应激反应。在小鼠体系中,TRIM8 的活性常用于研究泛素连接酶如何在细胞因子刺激和基因毒性应激下,协调转录输出、蛋白周转以及亚细胞运输。在实验模型中,TRIM8 相关信号与泛素化过程的失调与一些表型相关联,这些表型涉及神经发育功能异常、免疫失衡以及与癌症相关的信号情境。
TRIM8 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Trim8基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Trim8基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TRIM8 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Trim8靶位点的同源臂包围。
与 TRIM8 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Trim8 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。