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TRAF7 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-432463 | 20 µg | $397.00 | |||
TRAF7 HDR 质粒 (m) | sc-432463-HDR | 20 µg | $445.00 |
Traf7 编码 TRAF7,这是一种 E3 泛素连接酶,也是 TNF 受体相关因子(TRAF)家族中的衔接蛋白,负责将受体近端信号传导与依赖泛素的蛋白稳定性调控整合在一起。TRAF7 可调控炎症与应激反应通路,包括与 MAPK 和 NF-κB 信号的串扰,并通过与调控性辅因子的相互作用影响细胞凋亡、细胞骨架组织以及转录调控。在小鼠体系中,Traf7 的功能与研究免疫稳态以及在发育和组织重塑过程中对细胞命运决定的情境依赖性调控相关。TRAF7 介导的泛素化失调已被关联到信号输出的改变,并与疾病相关模型中出现的增殖性和炎症性表型有关。
TRAF7 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Traf7基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Traf7基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TRAF7 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Traf7靶位点的同源臂包围。
与 TRAF7 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Traf7 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。