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TMPRSS13 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-413534 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
TMPRSS13 HDR 质粒 (h) | sc-413534-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
TMPRSS13 编码一种 II 型跨膜丝氨酸蛋白酶,定位于细胞表面,参与对细胞外及细胞周围底物的受调控蛋白水解。通过调节蛋白酶级联反应,TMPRSS13 可影响上皮屏障稳态、炎症信号传导以及细胞外基质重塑;这些过程与调控细胞黏附与迁移的通路相互交织。跨膜丝氨酸蛋白酶的表达或活性改变,与在上皮相关病变及肿瘤相关微环境中观察到的蛋白水解网络失衡有关。因此,TMPRSS13 常被用于研究蛋白酶依赖性信号、细胞表面蛋白加工以及与疾病相关的上皮生物学。
TMPRSS13 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的TMPRSS13基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对TMPRSS13基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TMPRSS13 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定TMPRSS13靶位点的同源臂包围。
与 TMPRSS13 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在TMPRSS13 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。