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TM6SF1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-412251 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
TM6SF1 HDR 质粒 (h) | sc-412251-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
TM6SF1(跨膜6超家族成员1)编码一种多跨膜蛋白,被认为参与细胞内膜系统的组织,以及在分泌通路和内膜系统相关细胞器中进行脂质处理。尽管与TM6SF家族的其他成员相比,该基因的研究相对较少,但现有数据支持其在调控膜运输和脂质稳态方面的作用,从而影响细胞的代谢状态。跨膜脂质处理网络的扰动会影响内质网和高尔基体功能、囊泡运输以及下游的应激反应信号传导。因此,TM6SF1在将脂质代谢与肝脏和肠道生物学联系起来的研究中具有关注价值,也与更广泛的代谢性与炎症性疾病机制研究相关。
TM6SF1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的TM6SF1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对TM6SF1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TM6SF1 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定TM6SF1靶位点的同源臂包围。
与 TM6SF1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在TM6SF1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。