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TLF CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-433548 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
TLF HDR 质粒 (m) | sc-433548-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Tbpl1 编码一种 TBP 样转录因子(TLF;亦称 TRF2),它是 RNA 聚合酶 II 转录起始的核心调控因子,有助于决定启动子选择性并塑造哺乳动物细胞中的转录程序。在小鼠中,TLF 与生殖细胞发育和精子发生有关:它支持染色质重塑以及减数分裂进程和减数分裂后分化所需的阶段特异性基因表达。通过对转录控制的作用,Tbpl1 影响调控细胞命运决定、增殖和基因组完整性的多条通路。TLF 依赖的转录网络失调已在生殖表型及更广泛的发育异常背景下得到研究,因此 Tbpl1 是开展基因调控机制研究的一个有用靶点。
TLF CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Tbpl1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Tbpl1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TLF HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Tbpl1靶位点的同源臂包围。
与 TLF CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Tbpl1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。