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TGR5 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-432685 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
TGR5 HDR 质粒 (m) | sc-432685-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Gpbar1 编码 TGR5(GPBAR1),这是一种由胆汁酸激活的 G 蛋白偶联受体,主要与 Gαs 偶联,从而提高 cAMP 水平并启动依赖 PKA/CREB 的转录程序。在小鼠细胞中,TGR5 作为代谢与免疫调节的“传感器”,将胆汁酸信号与能量消耗、线粒体活性以及炎症基调的调控联系起来。受体激活会影响控制葡萄糖与脂质稳态的通路,并调节髓系细胞群体中的细胞因子产生,使 Gpbar1 成为研究肠道–肝脏–免疫系统串扰的一个有用节点。TGR5 信号失调已在代谢功能障碍、胆汁淤积应激以及炎症相关组织重塑等模型中被提示参与其中,因此在这些情境下具有机制研究价值。
TGR5 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Gpbar1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Gpbar1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,TGR5 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Gpbar1靶位点的同源臂包围。
与 TGR5 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Gpbar1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。