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Synaptotagmin VII CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-424885 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
Synaptotagmin VII HDR 质粒 (m) | sc-424885-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Syt7 编码突触结合蛋白 VII(synaptotagmin VII),这是一种可结合 Ca²⁺ 的膜蛋白,作为关键的 Ca²⁺ 传感器,将钙离子内流与 SNARE 依赖的膜融合过程耦联起来。它调控多条胞吐途径,包括溶酶体胞吐、质膜修复,以及神经元和免疫细胞中的分泌,从而参与突触传递和活动依赖性的囊泡释放。突触结合蛋白 VII 还会影响内吞作用和囊泡回收,将钙动态与囊泡运输及细胞应激反应联系起来。在神经退行性变、炎症以及分泌表型改变等研究背景中,SYT7 相关的胞吐与膜修复机制失调是重要的关注点。
Synaptotagmin VII CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Syt7基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Syt7基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,Synaptotagmin VII HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Syt7靶位点的同源臂包围。
与 Synaptotagmin VII CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Syt7 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。