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SLC35F1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-407461 | 20 µg | $397.00 | |||
SLC35F1 HDR 质粒 (h) | sc-407461-HDR | 20 µg | $445.00 |
SLC35F1 编码一种预测的溶质载体蛋白,据信定位于细胞膜系统并参与小分子在细胞内的转运,可能通过调控内膜系统各腔室中的代谢物可用性发挥作用。作为 SLC35 家族成员,它常被放在核苷酸糖处理及糖基化相关过程的背景下讨论;这些过程会影响蛋白质成熟、细胞内运输以及细胞—细胞相互作用。转录组与基因组研究在多个疾病数据集中报道了 SLC35F1 表达改变,支持其作为候选基因用于研究癌症及其他复杂疾病中异常转运程序的价值。尽管其功能注释尚不完整,SLC35F1 仍经常被纳入关注膜转运、细胞应激反应以及与分化相关的分泌通路重塑等方向的通路筛选研究中。
SLC35F1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的SLC35F1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对SLC35F1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,SLC35F1 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定SLC35F1靶位点的同源臂包围。
与 SLC35F1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在SLC35F1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。