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RB1CC1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-419502 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
RB1CC1 HDR 质粒 (m) | sc-419502-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Rb1cc1 编码 RB1CC1(又称 FIP200),它是 ULK1 自噬起始复合物的核心组分之一,在营养和能量应激条件下协调自噬体早期形成。RB1CC1 整合来自 mTORC1 与 AMPK 信号通路的上游输入,从而调控自噬通量、蛋白质稳态以及细胞对代谢信号的适应。除自噬之外,RB1CC1 还参与影响细胞增殖与生存决策的多种稳态维持通路,因此在小鼠模型中研究应激反应与组织维持具有重要意义。在以蛋白质周转改变、代谢失衡或异常生长控制为关键实验变量的研究背景下,RB1CC1 相关自噬及信号网络的失调已与疾病相关表型联系在一起。
RB1CC1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Rb1cc1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Rb1cc1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,RB1CC1 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Rb1cc1靶位点的同源臂包围。
与 RB1CC1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Rb1cc1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。