P2X7CRISPR激活质粒(m): sc-422093-ACT
- 针对种属：mouse
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- P2X7 CRISPER激活质粒（m）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- P2X7 CRISPR 激活质粒 (m)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 P2X7 CRISPR 激活质粒 (m) 和 P2X7 CRISPR 激活质粒 (m2) 编码的 gRNA 分别针对 P2rx7 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：P2X7: sc-514962，通过WB, IF或者IHC分析
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| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
P2X7CRISPR激活质粒(m) | sc-422093-ACT | 20 µg | CNY2986.00 |
小鼠 P2rx7 基因编码 P2X7 受体，这是一种由 ATP 门控的阳离子通道，在免疫细胞和胶质细胞中高表达。它将细胞外危险信号与 Ca²⁺/Na⁺ 内流、K⁺ 外流以及在持续刺激下的膜孔形成相连接。P2X7 是炎性小体信号通路的关键上游调控因子，可促进 NLRP3 激活以及 IL-1β/IL-18 的成熟；同时也会影响磷脂酶活性、MAPK/NF-κB 通路和细胞死亡程序。通过这些机制，P2rx7 参与调控细胞因子释放、吞噬细胞的抗微生物反应以及神经—免疫通讯。在临床前模型中，P2X7 信号异常与炎症和神经炎症表型、痛觉过敏以及肿瘤微环境的免疫调控相关，支持其用于以通路为重点的研究。
P2X7 CRISPR激活质粒（m）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性P2rx7的表达。
P2X7 CRISPR激活质粒（m）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的P2rx7基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于P2rx7转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性P2X7表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的P2rx7位点，并能够研究内源性位点上依赖于P2X7的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在P2rx7表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟P2X7通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。