OPN1MW2CRISPR激活质粒(h): sc-418725-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- OPN1MW2 CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- OPN1MW2 CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 OPN1MW2 CRISPR 激活质粒 (h) 和 OPN1MW2 CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 OPN1MW2 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
OPN1MW2CRISPR激活质粒(h) | sc-418725-ACT | 20 µg | CNY2986.00 | |||
OPN1MW2CRISPR激活质粒(h2) | sc-418725-ACT-2 | 20 µg | CNY2986.00 |
OPN1MW2 编码一种对中波长敏感的视锥视蛋白，表达于视网膜视锥光感受器中；它与 11-顺式视黄醛结合，形成受光激活的 GPCR，从而启动光信号转导。吸收光子后，被激活的视蛋白与转导蛋白 transducin（GNAT2）偶联，通过磷酸二酯酶活性调控 cGMP 水平，促使 cGMP 门控通道关闭并引起视锥细胞超极化。该通路通过对视锥信号与适应过程的精确调节，支持色彩辨别与日间高视力。OPN1MW 基因簇内的变异与遗传性色觉缺陷及光谱敏感性改变相关，因此 OPN1MW2 对于研究视网膜生物学中的基因型—表型关系具有重要意义。
OPN1MW2 CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性OPN1MW2的表达。
OPN1MW2 CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的OPN1MW2基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于OPN1MW2转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性OPN1MW2表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的OPN1MW2位点，并能够研究内源性位点上依赖于OPN1MW2的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在OPN1MW2表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟OPN1MW2通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。