Date published: 2026-7-25

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NAT-11双切口酶质粒(h): sc-413259-NIC

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说明书
  • 针对种属:human
  • 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA,最多可供20次转染
  • NAT-11 双切口酶质粒(h)含有一对质粒,分别编码D10A突变的Cas9核酸酶,和目标特异的 20 nt 向导RNA (gRNA),与其相应的/%base_sku_name%/ CRISPR/Cas9敲除质粒相比,它在基因敲除方面具有更好的特异性
  • 成对的向导RNA序列与目标基因中约20个碱基对互补,从而使Cas9可以模仿DNA双链断裂(DSB),介导特异的基因组DNA双切割
  • 质粒对中的一个包含供筛选使用的嘌呤霉素抗性基因;另一个包含供观察转染使用的绿色荧光蛋白标记
  • NAT-11双切酶质粒(h)和NAT-11双切酶质粒(h2)编码针对NAA40的不同配对gRNA设计。其中一种或两种设计可能均有提供
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    NAT-11双切口酶质粒(h)

    sc-413259-NIC
    20 µg
    CNY3084.00

    NAT-11双切口酶质粒(h2)

    sc-413259-NIC-2
    20 µg
    CNY3084.00

    NAA40 编码 N 端乙酰转移酶 NAT-11,这种酶催化组蛋白 H4 在 Ser1 位点的 Nα-乙酰化,并有助于塑造染色质结构与转录输出。通过调控组蛋白修饰状态,NAT-11 参与细胞周期进程、以 DNA 为模板的各类过程以及基因组稳定性的维持等表观遗传层面的调控。NAA40 活性的扰动与基因表达程序改变及增殖能力变化相关,因此在研究依赖染色质的信号传导与应激反应时具有重要意义。由于组蛋白 N 端乙酰化与更广泛的表观遗传网络相互交织,NAA40 常在染色质失调伴随疾病相关表型的研究背景中被重点考察。

    NAT-11 双切酶质粒(h)由一对匹配的质粒组成,专为在 human 细胞系中对 NAA40 位点进行高特异性编辑而设计。每个质粒分别表达Cas9 D10A切口酶和针对NAA40内不同DNA链的独特sgRNA。当这两种切口酶被引导至相邻但位于DNA链相反侧的位点时,会产生错位的单链切口,从而共同形成错位双链断裂,这需要两个引导RNA在靶位点上协同发挥作用。由此产生的DNA断裂通过内源性细胞修复途径(最常见的是非同源末端连接(NHEJ))得到修复,从而导致插入或缺失,进而破坏NAA40的功能。通过要求双sgRNA在靶位点结合,双切口方法提高了编辑特异性,并为需要对靶向精度进行额外控制的应用提供了互补的CRISPR策略。

    为高效识别编辑后的细胞,其中一个质粒编码GFP以实现转染细胞群的荧光可视化,而配套质粒则携带嘌呤霉素抗性基因用于抗生素筛选。这些特性共同支持共转染细胞群的高效富集,并简化了NAA40基因失活克隆的验证流程。

    仅供研究使用。不用于诊断或治疗。