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MYSM1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-405349 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
MYSM1 HDR 质粒 (h) | sc-405349-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
MYSM1(myb-like、SWIRM 和 MPN 结构域蛋白 1)编码一种核内去泛素化酶,可去除组蛋白 H2A 上的单泛素标记(H2AK119ub),从而拮抗 Polycomb 介导的转录抑制,并促进转录激活程序。通过依赖 SWIRM/MPN 结构域的染色质重塑,MYSM1 参与调控造血发育、免疫细胞分化,并在复制压力与 DNA 损伤应答过程中维持基因组稳定性。功能缺失变异与骨髓衰竭表型、免疫缺陷及更广泛的发育异常有关,凸显其在谱系决定的表观遗传调控中的重要性。因此,MYSM1 被广泛用于研究组蛋白泛素化、转录调控与细胞稳态整合的相关通路。
MYSM1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的MYSM1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对MYSM1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,MYSM1 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定MYSM1靶位点的同源臂包围。
与 MYSM1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在MYSM1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。