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LRP CRISPR/Cas9 KO质粒 (m2) | sc-429657-KO-2 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
LRP HDR 质粒 (m2) | sc-429657-HDR-2 | 20 µg | CNY3347.00 |
小鼠 Mvp 基因编码主要囊泡蛋白(major vault protein),通常称为 LRP,是囊泡核糖核蛋白颗粒(vault ribonucleoprotein particles)的主要结构组分;该复合体被认为参与细胞内运输与信号整合。研究表明,LRP 与细胞应激反应调控、外源性化合物(xenobiotic)处理,以及包括 PI3K/AKT 和 MAPK 在内的激酶驱动通路的调节有关,并且还与自噬和先天免疫信号存在额外关联。MVP/LRP 表达的改变与药物反应、炎症及肿瘤生物学相关的表型相关,因此可作为研究细胞适应机制的一个有用节点。在实验体系中,对 LRP 进行扰动有助于阐明 vault 复合体在应激条件下如何影响细胞内转运、细胞保护以及不同通路之间的串话。
LRP CRISPR/Cas9 敲除质粒(m2)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Mvp基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Mvp基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,LRP HDR质粒(m2)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Mvp靶位点的同源臂包围。
与 LRP CRISPR/Cas9 敲除质粒(m2)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Mvp 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。