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LPGAT1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-432665 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
LPGAT1 HDR 质粒 (m) | sc-432665-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Lpgat1 编码溶血磷脂酰甘油酰基转移酶 1(LPGAT1)。该酶定位于内质网相关膜系,通过催化溶血磷脂酰甘油(lysophosphatidylglycerol)再酰化生成磷脂酰甘油(phosphatidylglycerol),从而对磷脂进行重塑。LPGAT1 通过参与 Lands 循环,帮助塑造膜脂组成,并支持与磷脂酰甘油和心磷脂稳态相关的线粒体磷脂网络。酰基转移酶介导的脂质重塑通路活性改变与细胞能量代谢、膜运输以及应激反应密切相关,而这些过程常在代谢与炎症生物学研究中被重点探究。因此,在小鼠体系中,研究者常利用 Lpgat1 将磷脂重塑与细胞器功能及脂质失衡相关表型联系起来。
LPGAT1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Lpgat1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Lpgat1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,LPGAT1 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Lpgat1靶位点的同源臂包围。
与 LPGAT1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Lpgat1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。