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LEF-1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-421411 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
LEF-1 HDR 质粒 (m) | sc-421411-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Lef1 编码淋巴样增强子结合因子 1(LEF-1),它属于 TCF/LEF 家族转录因子,可与 β-连环蛋白(β-catenin)协同作用,传递经典 Wnt 信号。LEF-1 在不同细胞环境下调控相应的基因程序,控制细胞命运决定、增殖与分化,作用范围覆盖发育期及成年组织,包括造血系统和上皮组织等。通过调节 Wnt/β-catenin 靶基因,LEF-1 影响干细胞/祖细胞的维持与谱系分化;其失调与异常组织重塑及致癌性转录网络有关。因此,小鼠 LEF-1 常被用于研究 Wnt 驱动的转录调控,以及在发育与疾病模型中基因型—表型之间的关系。
LEF-1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Lef1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Lef1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,LEF-1 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Lef1靶位点的同源臂包围。
与 LEF-1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Lef1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。