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ITM1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m2) | sc-421187-KO-2 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
ITM1 HDR 质粒 (m2) | sc-421187-HDR-2 | 20 µg | CNY3347.00 |
小鼠 Stt3a 编码寡糖基转移酶(oligosaccharyltransferase,OST)复合体的一个催化亚基(亦称 ITM1),该复合体在内质网中介导新生多肽的共翻译 N-连接型糖基化。通过将预先组装好的寡糖转移到位于共识序列基序(sequon)中的 Asn 残基上,STT3A 影响蛋白质折叠、质量控制与转运,从而塑造蛋白稳态(proteostasis)以及分泌通路的输出。STT3A 依赖的糖基化通过影响膜蛋白和分泌蛋白的成熟过程,与内质网应激信号及未折叠蛋白反应(UPR)通路发生交互。N-糖基化失调已被关联到细胞应激表型,以及与疾病相关的受体信号和免疫相关过程改变,因此 Stt3a 是用于研究糖蛋白生物发生机制的一个有价值靶点。
ITM1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m2)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Stt3a基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Stt3a基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,ITM1 HDR质粒(m2)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Stt3a靶位点的同源臂包围。
与 ITM1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m2)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Stt3a 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。