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FBL11 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-432571 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
FBL11 HDR 质粒 (m) | sc-432571-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Kdm2a 编码赖氨酸去甲基化酶 FBL11,这是一种表观遗传调控因子,可通过其 CXXC 锌指结构域识别富含 CpG 的染色质,并调节与转录控制相关的组蛋白甲基化状态。FBL11 参与染色质重塑以及转录抑制/激活程序,从而影响细胞周期进程、分化以及基因组完整性的维持。通过塑造启动子及调控元件处的染色质可及性,Kdm2a 与更广泛的通路相衔接,这些通路共同调控 RNA 聚合酶 II 依赖的基因表达以及应激响应型转录网络。KDM2A 活性失调与增殖异常和发育表型改变有关,提示其在肿瘤相关转录、干细胞生物学以及疾病表观遗传机制研究中具有重要意义。
FBL11 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Kdm2a基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Kdm2a基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,FBL11 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Kdm2a靶位点的同源臂包围。
与 FBL11 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Kdm2a 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。