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CPTICRISPR激活质粒(m) | sc-419786-ACT | 20 µg | CNY2986.00 | |||
CPTICRISPR激活质粒(m2) | sc-419786-ACT-2 | 20 µg | CNY2986.00 |
小鼠 Cpt1a 编码肉碱棕榈酰转移酶 1A(CPTI),这是通过肉碱穿梭系统将长链脂肪酸导入线粒体以进行 β-氧化的限速酶。CPTI 通过调控乙酰辅酶 A 的生成与能量通量,将营养可利用性与线粒体呼吸相整合,并影响脂质稳态、氧化还原平衡以及代谢信号传导。Cpt1a 的活性塑造细胞对禁食和高脂条件的反应,并参与高氧化需求组织中的代谢重编程。在小鼠模型中,CPTI 相关脂肪酸氧化的失调与多种代谢表型有关,这些表型涉及胰岛素敏感性、肝脏脂质处理以及炎症激活状态。
CPTI CRISPR激活质粒(m)提供了一种靶向、非破坏性的方法,可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性Cpt1a的表达。
CPTI CRISPR激活质粒(m)是一个由三条质粒组成的协同激活介导(SAM)系统,旨在对人类细胞系中的Cpt1a基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变(D10A 和 N863A)的无催化活性的 Cas9(dCas9)为核心,这些突变消除了核酸酶活性,同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合,并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用,并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA,其与两个MS2 RNA适配体融合,这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点,并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送,以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后,SAM复合物结合于Cpt1a转录起始位点上游约200 bp处,VP64、p65和HSF1在此协同作用,招募转录 machinery并驱动内源性CPTI表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同, dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列,从而保留了原生的Cpt1a位点,并能够研究内源性位点上依赖于CPTI的转录反应,使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在Cpt1a表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟CPTI通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。