非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
CPT1-CCRISPR激活质粒(h): sc-402510-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- CPT1-C CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- CPT1-C CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 CPT1-C CRISPR 激活质粒 (h) 和 CPT1-C CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 CPT1C 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：CPT1-C: sc-514555，通过WB, IF或者IHC分析
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| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
CPT1-CCRISPR激活质粒(h) | sc-402510-ACT | 20 µg | CNY2986.00 |
人类 CPT1C 基因编码肉碱棕榈酰转移酶 1C（carnitine palmitoyltransferase 1C，CPT1‑C）。CPT1‑C 是 CPT1 家族中一种非典型成员，在神经系统中富集，可将脂质代谢与细胞能量与氧化还原稳态联系起来。不同于线粒体 CPT1A/B 可直接驱动长链脂肪酸的 β‑氧化，CPT1‑C 更被认为是一种代谢传感器，影响脂质处理、内质网（ER）应激反应，以及与 AMPK 和 mTOR 相关、将营养状态与神经元功能相耦联的信号通路。已有研究将 CPT1C 活性与膜脂组成的调控及对能量应激的适应性反应联系起来，而这些过程对突触维持与神经元存活至关重要。在神经退行性病变、代谢应激以及肿瘤细胞代谢重编程等背景下，均有 CPT1C 表达改变的报道，因此它对于脂质依赖性信号程序的机制研究具有相关性。
CPT1-C CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性CPT1C的表达。
CPT1-C CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的CPT1C基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于CPT1C转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性CPT1-C表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的CPT1C位点，并能够研究内源性位点上依赖于CPT1-C的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在CPT1C表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟CPT1-C通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。