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CD37 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-419547 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
CD37 HDR 质粒 (m) | sc-419547-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
Cd37 编码 CD37,这是一种四跨膜蛋白(tetraspanin)家族的细胞表面糖蛋白,富集于 B 细胞及其他抗原呈递型免疫细胞。在这些细胞中,CD37 负责组织膜微结构域,从而协调受体信号传导与细胞—细胞相互作用。CD37 通过支架化信号复合物并影响内吞运输过程,调控 B 细胞受体信号、整合素依赖的黏附与迁移,以及免疫突触的形成。CD37 的表达或功能异常与体液免疫失衡、抗原呈递改变以及白细胞激活状态紊乱有关,这些变化与炎症及淋巴增殖相关生物学过程密切相关。在小鼠模型中,Cd37 为研究造血系统各细胞区室的免疫稳态以及信号网络重塑提供了一个便于操作的切入点。
CD37 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Cd37基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Cd37基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,CD37 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Cd37靶位点的同源臂包围。
与 CD37 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Cd37 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。