非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
CD35CRISPR激活质粒(h): sc-401210-ACT
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- CD35 CRISPER激活质粒（h）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- CD35 CRISPR 激活质粒 (h)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 CD35 CRISPR 激活质粒 (h) 和 CD35 CRISPR 激活质粒 (h2) 编码的 gRNA 分别针对 CR1 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：CD35: sc-7308，通过WB, IF或者IHC分析
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
CD35CRISPR激活质粒(h) | sc-401210-ACT | 20 µg | CNY2986.00 |
补体受体1（CR1），又称CD35，是一种表达于红细胞、白细胞以及滤泡树突状细胞表面的糖蛋白，可结合补体调理素C3b和C4b，从而促进免疫复合物清除并调控补体级联反应的扩增。CD35通过加速C3/C5转化酶的衰变，并作为因子I介导C3b/C4b裂解的辅因子，进而在炎症反应过程中影响先天免疫信号传导、吞噬作用以及抗原处理。CR1的功能与经典途径和旁路途径均有交叉，影响宿主防御、免疫复合物转运，并与Fc受体介导的过程发生串扰。CR1的遗传与表达差异与免疫复合物驱动的炎症以及补体相关的神经炎症和血液学表型的易感性与发病机制改变有关，支持其作为机制研究靶点的价值。
CD35 CRISPR激活质粒（h）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性CR1的表达。
CD35 CRISPR激活质粒（h）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的CR1基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于CR1转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性CD35表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的CR1位点，并能够研究内源性位点上依赖于CD35的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在CR1表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟CD35通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。