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BTR1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-418241 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
BTR1 HDR 质粒 (h) | sc-418241-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
SLC4A11 编码 BTR1,是 SLC4 碳酸氢盐转运体家族中的一种膜转运蛋白,在角膜内皮以及其他上皮组织中高表达。BTR1 参与跨膜离子与溶质的转运与处理,有助于维持 pH 稳态、渗透平衡和细胞体积调控;这些过程会影响上皮屏障生理功能以及线粒体应激反应。SLC4A11 功能受损与角膜内皮功能障碍和遗传性角膜营养不良有关,这与其在维持角膜基质水合状态和内皮泵功能中的作用相一致。因此,SLC4A11 是研究上皮与内皮细胞模型中“离子转运耦联的代谢与应激通路”的一个有用靶点。
BTR1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的SLC4A11基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对SLC4A11基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,BTR1 HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定SLC4A11靶位点的同源臂包围。
与 BTR1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在SLC4A11 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。