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BRAF CRISPR/Cas9 KO质粒 (h) | sc-400121 | 20 µg | CNY2986.00 | |||
BRAF HDR 质粒 (h) | sc-400121-HDR | 20 µg | CNY3347.00 |
BRAF 编码一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是 RAS–RAF–MEK–ERK(MAPK)级联通路中的关键信号转导因子,将被激活的 RAS 与下游磷酸化事件连接起来,从而调控细胞增殖、分化和存活。通过依赖 ERK 的转录与翻译后调控,BRAF 将促有丝分裂信号与细胞周期进程以及 MAPK 信号网络中的反馈调节整合在一起。BRAF 活性失调被广泛认为与致癌信号传导有关,BRAF 的改变也常被用作癌症生物学中 MAPK 通路过度激活的典型驱动模型。作为通路中的枢纽激酶,BRAF 还因其与 PI3K/AKT 信号的通路串扰、适应性耐药机制以及谱系特异性依赖等作用而受到研究关注。
BRAF CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)是一组质粒池,旨在针对性地破坏human细胞系中的BRAF基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对BRAF基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,BRAF HDR质粒(h)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定BRAF靶位点的同源臂包围。
与 BRAF CRISPR/Cas9 敲除质粒(h)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在BRAF 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。