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Blr1双切口酶质粒(h) | sc-402672-NIC | 20 µg | CNY3084.00 | |||
Blr1双切口酶质粒(h2) | sc-402672-NIC-2 | 20 µg | CNY3084.00 |
CXCR5 编码趋化因子受体 Blr1(CD185),这是一种七次跨膜的 GPCR,可与 CXCL13 结合,引导 B 细胞和滤泡辅助性 T 细胞进入 B 细胞滤泡和生发中心。配体结合后会激活异源三聚体 G 蛋白信号传导,并下游启动 PI3K–AKT、MAPK 以及钙离子通量等通路,从而协同调控趋化迁移、黏附动力学以及淋巴组织的结构组织。CXCR5 依赖的转运与定位是体液免疫、亲和力成熟和淋巴组织新生的关键环节;CXCR5/BLR1 信号异常也常用于研究免疫失衡以及 B 细胞谱系恶性肿瘤。此外,外周循环 T 细胞上的 CXCR5 表达也被广泛用于解析滤泡辅助样表型及其在炎症和自身免疫中的作用。
Blr1 双切酶质粒(h)由一对匹配的质粒组成,专为在 human 细胞系中对 CXCR5 位点进行高特异性编辑而设计。每个质粒分别表达Cas9 D10A切口酶和针对CXCR5内不同DNA链的独特sgRNA。当这两种切口酶被引导至相邻但位于DNA链相反侧的位点时,会产生错位的单链切口,从而共同形成错位双链断裂,这需要两个引导RNA在靶位点上协同发挥作用。由此产生的DNA断裂通过内源性细胞修复途径(最常见的是非同源末端连接(NHEJ))得到修复,从而导致插入或缺失,进而破坏CXCR5的功能。通过要求双sgRNA在靶位点结合,双切口方法提高了编辑特异性,并为需要对靶向精度进行额外控制的应用提供了互补的CRISPR策略。
为高效识别编辑后的细胞,其中一个质粒编码GFP以实现转染细胞群的荧光可视化,而配套质粒则携带嘌呤霉素抗性基因用于抗生素筛选。这些特性共同支持共转染细胞群的高效富集,并简化了CXCR5基因失活克隆的验证流程。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。