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ATP13A2CRISPR激活质粒(h) | sc-404770-ACT | 20 µg | CNY2986.00 |
ATP13A2 编码一种定位于溶酶体的 P5 型 ATP 酶,参与维持内体–溶酶体系统稳态,包括溶酶体膜功能、阳离子与多胺的处理以及囊泡运输等过程。通过支持依赖溶酶体的质量控制,ATP13A2 影响自噬–溶酶体通量以及蛋白稳态相关通路,而这些通路与线粒体应激反应和氧化损伤存在交叉。ATP13A2 的破坏或失调与神经退行性表型有关,且反复被发现与青少年起病的帕金森综合征相关,并在细胞模型中观察到类似溶酶体贮积病的缺陷。因此,ATP13A2 因其在神经元易损性、易聚集蛋白的清除以及内体–溶酶体信号网络中的作用而受到广泛研究。
ATP13A2 CRISPR激活质粒(h)提供了一种靶向、非破坏性的方法,可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性ATP13A2的表达。
ATP13A2 CRISPR激活质粒(h)是一个由三条质粒组成的协同激活介导(SAM)系统,旨在对人类细胞系中的ATP13A2基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变(D10A 和 N863A)的无催化活性的 Cas9(dCas9)为核心,这些突变消除了核酸酶活性,同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合,并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用,并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA,其与两个MS2 RNA适配体融合,这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点,并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送,以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后,SAM复合物结合于ATP13A2转录起始位点上游约200 bp处,VP64、p65和HSF1在此协同作用,招募转录 machinery并驱动内源性ATP13A2表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同, dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列,从而保留了原生的ATP13A2位点,并能够研究内源性位点上依赖于ATP13A2的转录反应,使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在ATP13A2表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟ATP13A2通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。