非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
非 CRISPR 数据：图片说明了可视化 CRISPR 实验结果的抗体质量。
ATF-6αCRISPR激活质粒(m): sc-432646-ACT
- 针对种属：mouse
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- ATF-6α CRISPER激活质粒（m）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- ATF-6α CRISPR 激活质粒 (m)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 ATF-6α CRISPR 激活质粒 (m) 和 ATF-6α CRISPR 激活质粒 (m2) 编码的 gRNA 分别针对 Atf6 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：ATF-6α: sc-166659，通过WB, IF或者IHC分析
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
ATF-6αCRISPR激活质粒(m) | sc-432646-ACT | 20 µg | CNY2986.00 | |||
ATF-6αCRISPR激活质粒(m2) | sc-432646-ACT-2 | 20 µg | CNY2986.00 |
ATF6（激活转录因子6α）是一种锚定于内质网（ER）膜上的 bZIP 转录因子，是未折叠蛋白反应（UPR）的关键感受器之一。当内质网发生应激时，ATF-6α 会转运至高尔基体并发生受调控的膜内蛋白水解，释放出具有活性的 N 端片段，从而诱导参与蛋白稳态维持、内质网相关降解（ERAD）以及分子伴侣介导的蛋白折叠等过程的基因表达。ATF6 信号与 PERK–eIF2α 和 IRE1–XBP1 两条分支相互整合，协同调控细胞对分泌负荷、氧化应激及代谢信号的适应。ATF6 活性失调与多种具有慢性蛋白毒性应激特征的疾病相关，包括神经退行性变、糖尿病相关的 β 细胞功能障碍、炎症状态以及心肌病等，因此它是小鼠模型机制研究中的一个重要节点。
ATF-6α CRISPR激活质粒（m）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性Atf6的表达。
ATF-6α CRISPR激活质粒（m）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的Atf6基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于Atf6转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性ATF-6α表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的Atf6位点，并能够研究内源性位点上依赖于ATF-6α的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在Atf6表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟ATF-6α通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。