ArtemisCRISPR激活质粒(h2): sc-405295-ACT-2
- 针对种属：human
- 20 µg 纯化的即用型的质粒DNA，最多可供20次转染
- Artemis CRISPER激活质粒（h2）是一种协同激活介质（SAM）转录激活系统，目的在于特定上调基因表达
- Artemis CRISPR 激活质粒 (h2)包含三种质量比为1:1:1的质粒：一种质粒编码与转录激活结构域VP64融合的去活化的Cas9 (dCas9)核酸酶(D10A and N863A)，和杀稻瘟素抗性基因；一种质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白，和潮霉素抗性基因；一种质粒编码与两个MS2 RNA适体融合的目标特异的20 nt向导RNA，和嘌呤霉素抗性基因。
- 形成的SAM复合物结合到转录起始位点上游大约200-250 nt的特定位点区域，为高效激活基因提供转录因子的招募
- 由 Artemis CRISPR 激活质粒 (h2) 和 Artemis CRISPR 激活质粒 (h22) 编码的 gRNA 分别针对 DCLRE1C 转录起始位点上游的不同调控区域。其中一种或两种设计可能可用
- 转染后，基因敲除效率可以用抗体：Artemis: sc-518193，通过WB, IF或者IHC分析
订购信息
| 产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格 | 数量 | 收藏夹 | |
ArtemisCRISPR激活质粒(h2) | sc-405295-ACT-2 | 20 µg | CNY2986.00 |
人类DCLRE1C基因编码Artemis，它是一种DNA核酸内切酶，在V(D)J重组和非同源末端连接（NHEJ）过程中修复DNA双链断裂至关重要；在这些过程中，Artemis与DNA-PK复合物协同作用，负责打开发夹状编码末端并对受损DNA末端进行加工处理。Artemis的活性通过促进抗原受体基因的精准组装、并解决由电离辐射或复制应激产生的复杂DNA损伤，从而维持基因组稳定性并保证淋巴细胞的正常发育。DCLRE1C的功能缺失变异与重症联合免疫缺陷（SCID）及放射敏感性相关，凸显其在适应性免疫与DNA损伤应答信号通路交汇处的重要作用。针对DCLRE1C/Artemis的基因编辑与功能基因组学研究常用于建立NHEJ通路缺陷模型、探究双链断裂修复中末端处理的需求，并评估其对人类细胞染色体重排及免疫受体库形成的影响。
Artemis CRISPR激活质粒（h2）提供了一种靶向、非破坏性的方法，可在不改变底层DNA序列的情况下上调内源性DCLRE1C的表达。
Artemis CRISPR激活质粒（h2）是一个由三条质粒组成的协同激活介导（SAM）系统，旨在对人类细胞系中的DCLRE1C基因座进行高效、位点特异性的转录上调。该系统以一种携带两个失活突变（D10A 和 N863A）的无催化活性的 Cas9（dCas9）为核心，这些突变消除了核酸酶活性，同时保留了 DNA 结合能力。该 dCas9 与强效转录激活因子 VP64 融合，并与用于筛选的布拉西定抗性基因共同表达。第二个质粒编码MS2-p65-HSF1融合蛋白——这一二级激活复合物与dCas9-VP64协同作用，并携带潮霉素抗性基因。第三个质粒编码靶标特异性20 nt sgRNA，其与两个MS2 RNA适配体融合，这些适配体可将MS2-p65-HSF1复合物招募至激活位点，并携带嘌呤霉素抗性基因。这三个质粒按1:1:1的质量比递送，以确保系统所有组分的平衡表达。
在靶位点组装完成后，SAM复合物结合于DCLRE1C转录起始位点上游约200 bp处，VP64、p65和HSF1在此协同作用，招募转录 machinery并驱动内源性Artemis表达上调。与具有核酸酶活性的Cas9不同， dCas9不会引入双链断裂或修改基因组序列，从而保留了原生的DCLRE1C位点，并能够研究内源性位点上依赖于Artemis的转录反应，使其成为功能研究、靶基因鉴定以及在DCLRE1C表达被沉默或降低的肿瘤细胞中模拟Artemis通路恢复的宝贵工具。
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。